Histoloji

Vikipedi, özgür ansiklopedi
Gezintiye atla Aramaya atla
Optik mikroskop sahnesine yerleştirilen histolojik örnek .
Mikroskop altında görüldüğü gibi insan akciğer dokusu hematoksilen ve eozin ile boyandı .

Histoloji , [yardım 1] olarak da bilinen mikroskopik anatomisi veya mikroanatomisinin , [1] dalıdır biyoloji olan çalışmalar mikroskopik anatomisi biyolojik dokuların . [2] [3] [4] [5] Histoloji mikroskopik muadili olan anatomi , bir olmaksızın görünür büyük yapılar bakar mikroskop . [5] [6] Mikroskobik anatomi organoloji , organların incelenmesi, histoloji , doku çalışmaları ve sitoloji olarak ikiye ayrılabilir.Hücrelerin incelenmesi , modern kullanım tüm bu konuları histoloji alanına yerleştirir. [5] de ilaç , histopatoloji hastalıklı doku mikroskopik belirleme ve çalışma içerir histoloji dalıdır. [5] [6] Paleontoloji alanında, paleohistoloji terimi, fosil organizmaların histolojisini ifade eder . [7] [8]

Biyolojik dokular [ değiştir ]

Hayvan dokusu sınıflandırması [ değiştir ]

Dört temel hayvan dokusu türü vardır: kas dokusu , sinir dokusu , bağ dokusu ve epitel dokusu . [5] [9] Tüm hayvan dokuları, bu dört temel doku tipinin alt tipleri olarak kabul edilir (örneğin, kan hücreleri, hücre dışı bir matriks olan plazma içinde askıya alındığı için kan, bağ dokusu olarak sınıflandırılır ). [9]

  • Epitel
    • Basit epitel
      • Basit skuamöz epitel
      • Basit kübik epitel
      • Basit sütunlu epitel
    • Psödostratifiye kolumnar epitel
    • Çok katlı epitel
      • Tabakalı skuamöz epitel
      • Tabakalı kübik epitel
      • Tabakalı kolumnar epitel
      • Geçiş epitel
    • Çok hücreli bezler
  • Kas dokusu
    • Düz kas
    • İskelet kası
    • Kalp kası
  • Bağ dokusu
    • Genel bağ dokusu
      • Gevşek bağ dokusu
      • Yoğun bağ dokusu
    • Özel bağ dokusu
      • Kıkırdak
      • Kemik
      • Hemopoietik
      • Kan
      • Lenf
  • Sinir dokusu
    • Merkezi sinir sistemi
    • Periferik sinir sistemi
    • Özel reseptörler

Bitki dokusu sınıflandırması [ değiştir ]

Bir bitki sapının ( Alliaria petiolata ) histolojik bölümü .

Bitkiler için, dokularının incelenmesi , aşağıdaki dört ana türle bitki anatomisi alanına girer :

  • Deri dokusu
  • Vasküler doku
  • Zemin dokusu
  • Meristematik doku

Tıbbi histoloji [ değiştir ]

Histopatoloji , hastalıklı dokunun mikroskobik tanımlanmasını ve incelenmesini içeren histoloji dalıdır. [5] [6] Kanser ve diğer hastalıkların doğru teşhisi sıklıkla doku örneklerinin histopatolojik incelemesini gerektirdiğinden , anatomik patolojinin ve cerrahi patolojinin önemli bir parçasıdır . [10] Eğitimli hekimler, sıklıkla lisanslı patologlar , histopatolojik inceleme yaparlar ve gözlemlerine dayanarak tanısal bilgiler sağlarlar.

Meslekler [ değiştir ]

Dokuların mikroskobik inceleme için hazırlanmasını içeren histoloji alanı histoteknoloji olarak bilinir. Histolojik örnekleri inceleme için hazırlayan eğitimli personelin iş unvanları çoktur ve histoteknisyenler, histoteknologlar, [11] histoloji teknisyenleri ve teknologlar, tıbbi laboratuvar teknisyenleri ve biyomedikal bilim adamlarını içerir .

Örnek hazırlama [ düzenle ]

Çoğu histolojik numunenin mikroskobik gözlemden önce hazırlanması gerekir; bu yöntemler, numuneye ve gözlem yöntemine bağlıdır. [9]

Tespit [ düzenle ]

Fosilleşmiş bir omurgasızın histolojik bölümü. Ordovisyen bryozoan .

Kimyasal fiksatifler , doku ve hücrelerin yapısını korumak ve sürdürmek için kullanılır; fiksasyon ayrıca dokuları sertleştirerek, mikroskop altında gözlem için gerekli ince doku kesitlerinin kesilmesine yardımcı olur. [5] [12] Fiksatifler genellikle proteinleri geri çevrilemez şekilde çapraz bağlayarak dokuları (ve hücreleri) korur. [12] ışık mikroskopi için en yaygın olarak kullanılan sabitleyici% 10 nötr tamponlu olan formalin veya NBF (% 4 formaldehit içinde fosfat tampon salin ). [13] [12] [9]

Elektron mikroskobu için en yaygın kullanılan fiksatif , genellikle fosfat tamponlu salin içinde% 2.5'lik bir çözelti olarak glutaraldehittir . [9] Elektron mikroskobu için kullanılan diğer fiksatifler osmiyum tetroksit veya uranil asetattır . [9]

Bu başlıca etkisi aldehit fiksatif olduğu oluşumu yoluyla proteinlerde amino gruplarına çapraz bağlantı metilen köprüleri (-CH 2 -), ya da Cı-formaldehit durumunda, 5 H 10 glutaraldehid durumunda çapraz bağlar oluşturur. Bu işlem, hücrelerin ve dokunun yapısal bütünlüğünü korurken proteinlerin, özellikle enzimlerin biyolojik işlevselliğine zarar verebilir .

Formalin fiksasyonu, mRNA, miRNA ve DNA'nın degradasyonuna ve dokulardaki proteinlerin denatürasyonuna ve modifikasyonuna yol açar. Bununla birlikte, formalinle fikse edilmiş, parafine gömülü dokulardan nükleik asitlerin ve proteinlerin ekstraksiyonu ve analizi, uygun protokoller kullanılarak mümkündür. [14] [15]

Seçme ve kırpma [ düzenle ]

Örnekleri göndermek için kullanılan öğeler: (Biyopsi) sargı, (biyopsi) sünger, (doku işleme) kaset ve (biyopsi) torba.

Seçim , tüm orijinal doku kütlesinin ileri işlemlerden geçirilmesinin gerekli olmadığı durumlarda ilgili doku seçimidir. Geri kalanı, daha sonra incelenmesi gerekmesi durumunda sabit kalabilir.

Kırpma , ilgili yüzeyleri daha sonra bölümlere ayırmak için doku örneklerinin kesilmesidir. Ayrıca kasetlere sığacak şekilde uygun boyutta doku örnekleri oluşturur. [16]

Gömme [ düzenle ]

Dokular, hem destek olarak hem de ince doku dilimlerinin kesilmesine izin vermek için daha sert bir ortama gömülür. [9] [5] Genel olarak, su önce dokulardan çıkarılmalı (dehidrasyon) ve doğrudan katılaşan bir ortamla veya gömme ortamla karışabilen bir ara sıvı (temizleme) ile değiştirilmelidir. [12]

Parafin mumu [ değiştir ]

Parafin mumuna gömülü histolojik numune (doku bir metal kalıbın dibinde tutulur ve doldurmak için üzerine daha fazla erimiş parafin dökülür).

Işık mikroskobu için, parafin mumu en sık kullanılan gömme materyalidir. [12] [13] Parafin, biyolojik dokunun temel bileşeni olan suyla karışmaz, bu nedenle önce bir dizi dehidrasyon adımında uzaklaştırılması gerekir. [12] Numuneler, kalan su kalıntılarını gidermek için% 100'e kadar etanol olmak üzere giderek daha konsantre bir dizi etanol banyosundan aktarılır . [9] [12] Dehidrasyonu, alkolü uzaklaştıran ve karışabilen bir temizleme maddesi (tipik olarak ksilen [13], ancak diğer çevresel güvenli ikameler kullanımdadır [13] ) takip ederksileni değiştirmek ve dokuya sızmak için son olarak eritilmiş parafin balmumu balmumu ile eklenir. [9] Çoğu histoloji veya histopatoloji laboratuvarında dehidrasyon, temizleme ve balmumu infiltrasyonu, bu işlemi otomatikleştiren doku işlemcilerde gerçekleştirilir . [13] Parafine sızdıktan sonra dokular mumla doldurulmuş kalıplara yönlendirilir; bir kez konumlandırıldığında, mum soğutulur, bloğu ve dokuyu katılaştırır. [13] [12]

Diğer malzemeler [ düzenle ]

Parafin mumu, çok ince kesitleri kesmek için her zaman yeterince sert bir matris sağlamaz (özellikle elektron mikroskobu için önemlidir). [12] Parafin mumu ayrıca dokuya göre çok yumuşak olabilir, erimiş mumun ısısı dokuyu istenmeyen şekillerde değiştirebilir veya kurutucu veya temizleyici kimyasallar dokuya zarar verebilir. [12] Parafin mumuna alternatifler arasında epoksi , akrilik , agar , jelatin , selloidin ve diğer mum türleri bulunur. [12] [17]

Elektron mikroskobunda epoksi reçineler en yaygın kullanılan gömme ortamlarıdır [9] ancak akrilik reçineler de özellikle immünohistokimyanın gerekli olduğu yerlerde kullanılır .

Dokuların donmuş halde kesilmesi için dokular su bazlı bir gömme ortama yerleştirilir. Önceden dondurulmuş dokular, genellikle su bazlı bir glikol, OCT , TBS , Cryogel veya reçine gibi sıvı gömme materyali ile kalıplara yerleştirilir ve daha sonra sertleştirilmiş bloklar oluşturmak için dondurulur.

Bölümleme [ düzenle ]

Mikrotomda kesilen histolojik örnek.

Işık mikroskobu için, bir mikrotoma monte edilmiş bir bıçak , bir cam mikroskop lamı üzerine monte edilmiş doku bölümlerini (tipik olarak 5-15 mikrometre kalınlığında) kesmek için kullanılır . [9] Transmisyon elektron mikroskobu (TEM) için, ultramikrotoma monte edilmiş bir elmas veya cam bıçak , 50-150 nanometre kalınlığındaki doku kesitlerini kesmek için kullanılır . [9]

Boyama [ düzenle ]

Biyolojik doku, ışık veya elektron mikroskobunda çok az doğal kontrast içerir. [17] Boyama , hem dokuya kontrast vermek hem de ilgilenilen belirli özellikleri vurgulamak için kullanılır. Leke, dokunun belirli bir kimyasal bileşenini (genel yapıyı değil) hedeflemek için kullanıldığında, histokimya terimi kullanılır. [9]

Işık mikroskobu [ değiştir ]

Fare trakeasında Masson trikrom boyaması .

Hematoksilen ve eozin ( H&E boyası ), dokunun genel yapısını göstermek için histolojide en sık kullanılan boyalardan biridir. [9] [18] Hematoksilin, hücre çekirdeklerini maviye boyar; Asidik bir boya olan eozin, sitoplazmayı ve diğer dokuları farklı pembe lekeleriyle boyar. [9] [12]

Genel bir boyama olarak kullanılan H & E'nin aksine, hücreleri, hücresel bileşenleri ve belirli maddeleri daha seçici bir şekilde boyayan birçok teknik vardır. [12] Spesifik bir kimyasalı hedefleyen yaygın olarak uygulanan bir histokimyasal teknik, hemokromatoz gibi hastalıklarda demir birikimini [12] göstermek için kullanılan Perls'in Prusya mavisi reaksiyonudur . Nissl yöntemi Nissl madde ve için Golgi yöntemi (ve ilgili gümüş leke ) açısından da oldukça faydalıdır nöronlar daha özel lekeleri diğer örnekleridir. [12]

Historadyografi [ değiştir ]

Gelen historadiography , slayt (bazen histokimyasal olarak boyandı) X-ışınları olduğunu. Daha yaygın olarak, otoradyografi , tritiatlı timidin içeren S fazındaki hücreler ( DNA replikasyonuna giren ) veya radyo-etiketli nükleik asit problarının bağlandığı alanlar gibi, Mr, Hashmi'nin vücut içinde nakledildiği yerleri görselleştirmek için otoradyografi kullanılır. de in situ hibridizasyon . Mikroskobik düzeyde otoradyografi için, slayt tipik olarak, pozlama filmini oluşturmak için kuruyan sıvı nükleer kanal emülsiyonuna daldırılır. Filmdeki tek tek gümüş taneleri karanlık alan mikroskobu ile görselleştirilir .

İmmünohistokimya [ değiştir ]

Son zamanlarda antikorlar , proteinleri, karbonhidratları ve lipidleri spesifik olarak görselleştirmek için kullanılmıştır. Bu işleme immünohistokimya veya leke bir floresan molekül olduğunda immünofloresan denir . Bu teknik, hücre kategorilerini mikroskop altında tanımlama yeteneğini büyük ölçüde artırmıştır. Radyoaktif olmayan in situ hibridizasyon gibi diğer gelişmiş teknikler, immünofloresan ve enzime bağlı floresan amplifikasyonu (özellikle alkalin fosfataz ve tiramid sinyal amplifikasyonu) için kullanılabilen floresan problar veya etiketlerle spesifik DNA veya RNA moleküllerini tanımlamak için immünokimya ile birleştirilebilir . Floresan mikroskobuve konfokal mikroskopi , iyi hücre içi ayrıntıya sahip floresan sinyalleri saptamak için kullanılır.

Elektron mikroskobu [ değiştir ]

Elektron mikroskobu için ağır metaller tipik olarak doku bölümlerini boyamak için kullanılır. [9] Uranil asetat ve kurşun sitrat, elektron mikroskobunda dokuya kontrast vermek için yaygın olarak kullanılır. [9]

Özel teknikler [ değiştir ]

Kriyoseksiyon [ düzenle ]

Tıpta kullanılan dondurulmuş kesit prosedürüne benzer şekilde , kriyoseksiyon , doku kesitlerini histoloji için hızla dondurmak, kesmek ve monte etmek için bir yöntemdir. Doku genellikle bir kriyostat veya dondurucu mikrotom üzerinde kesitlere ayrılır. [12] Dondurulmuş bölümler bir cam slayt üzerine monte edilir ve farklı dokular arasındaki kontrastı artırmak için boyanabilir. Sabitlenmemiş donmuş kesitler, dokularda ve hücrelerde enzim lokalizasyonu gerektiren çalışmalar için kullanılabilir. Antikora bağlı immünofloresan boyama gibi belirli prosedürler için doku fiksasyonu gereklidir . Dondurulmuş kesitler genellikle tümörün cerrahi olarak çıkarılması sırasında tümör sınırlarının hızlı bir şekilde tanımlanmasına olanak sağlamak için hazırlanır .Mohs ameliyatı veya ameliyat sırasında tesadüfen bir tümör keşfedildiğinde tümör malignitesinin belirlenmesi.

Ultramikrotomi [ değiştir ]

Transmisyon elektron mikroskobu altında yeşil algler

Ultramikrotomi, transmisyon elektron mikroskobu (TEM) analizi için son derece ince kesitler hazırlama yöntemidir . Dokular genellikle epoksi veya diğer plastik reçinelere gömülür . [9] Çok ince kesitler (kalınlığı 0.1 mikrometreden az), bir ultramikrotom üzerinde elmas veya cam bıçaklar kullanılarak kesilir . [12]

Yapılar [ düzenle ]

Artefaktlar, normal histolojik incelemeyi engelleyen dokudaki yapılar veya özelliklerdir. Artefaktlar, doku görünümünü değiştirerek ve yapıları gizleyerek histolojiye müdahale eder. Doku işleme artefaktları, fiksatifler tarafından oluşturulan pigmentleri, [12] büzülmeyi, hücresel bileşenlerin yıkanmasını, farklı doku tiplerinde renk değişikliklerini ve dokudaki yapıların değişikliklerini içerebilir . Bir örnek, bir bölümü sabitlemek için Zenker'in fiksatifini kullandıktan sonra geride kalan cıva pigmentidir . [12] Formalin fiksasyonu, asidik koşullar altında kahverengiden siyaha bir pigment bırakabilir. [12]

Tarih [ düzenle ]

Santiago Ramón y Cajal laboratuvarında.

17. yüzyılda İtalyan Marcello Malpighi, küçük biyolojik varlıkları incelemek için mikroskoplar kullandı; bazıları onu histoloji ve mikroskobik patoloji alanlarının kurucusu olarak görüyor. [19] [20] Malpighi yarasa, kurbağa ve diğer hayvanların organlarının çeşitli kısımlarını mikroskop altında analiz etti. Akciğerin yapısını incelerken, Malpighi onun membranöz alveollerini ve kılcal damarlar adını verdiği damarlar ve arterler arasındaki saç benzeri bağlantıları fark etti. Keşfi, solunan oksijenin kan dolaşımına nasıl girdiğini ve vücuda nasıl hizmet ettiğini ortaya koydu. [21]

19. yüzyılda histoloji, başlı başına bir akademik disiplindi. Fransız anatomist Xavier Bichat , 1801'de anatomide doku kavramını [22] ve "dokuların incelenmesi" anlamına gelen "histoloji" ( Almanca : Histoloji ) terimini tanıttı , ilk olarak 1819'da Karl Meyer tarafından bir kitapta yayınlandı. . [23] [24] [19] Bichat anda histologists tarafından kabul edilen dört kategori altında toplanabilir yirmi bir insan dokuları tarif. [25] Bichat tarafından yararsız olduğu düşünülen histolojide illüstrasyonların kullanımı Jean Cruveilhier tarafından tanıtıldı . [26] [ne zaman? ]

1830'ların başlarında Purkynĕ , yüksek hassasiyetli bir mikrotom icat etti. [24]

19. yüzyılda Adolph Hannover ( kromat ve kromik asit solüsyonları ), Franz Schulze ve Max Schultze ( osmik asit ), Alexander Butlerov ( formaldehit ) ve Benedikt Stilling ( dondurma ) tarafından birçok fiksasyon tekniği geliştirilmiştir . [24]

Montaj teknikleri, Arapça zamkını tanıtan Rudolf Heidenhain (1824-1898) tarafından geliştirilmiştir ; Balmumu ve yağ karışımını savunan Salomon Stricker (1834-1898); ve 1832'de sakız / izinglass karışımı kullanan Andrew Pritchard (1804-1884) . Aynı yıl, Kanada balsamı sahneye çıktı ve 1869'da Edwin Klebs (1834-1913) örneklerini birkaç yıldır parafine gömdüğünü bildirdi. [27]

1906 Nobel Fizyoloji veya Tıp Ödülü , histologlar Camillo Golgi ve Santiago Ramon y Cajal'a verildi . Aynı görüntülerin farklı yorumlarına dayalı olarak beynin sinir yapısı hakkında çelişkili yorumlar yaptılar. Ramón y Cajal, doğru teorisi için ödülü ve bunu mümkün kılmak için icat ettiği gümüş boyama tekniği için Golgi'yi kazandı . [28]

Gelecekteki talimatlar [ düzenle ]

In vivo histoloji [ değiştir ]

Şu anda , doktorların sabit doku örneklerinden ziyade canlı hastalarda sağlıklı ve hastalıklı dokular hakkında invaziv olmayan bir şekilde bilgi toplamasına olanak tanıyan in vivo histoloji (ağırlıklı olarak MRI kullanılarak ) tekniklerinin geliştirilmesine yoğun bir ilgi vardır . [29] [30] [31] [32]

Notlar [ düzenle ]

  1. ^ Kelimesinin histolojisi ( / h ɪ s t ɒ l ə dʒ i / ) olan Yeni Latin kullanarak birleştiren biçimleri arasında histo + -logy itibaren "doku çalışma", sonuçta Yunan kelimeler ἱστός histos , "doku", ve -λογία , "çalışma".

Referanslar [ düzenle ]

  1. ^ "Mikroanatomi tanımı ve anlamı" . Collins İngilizce Sözlüğü .
  2. ^ "Histoloji | fizyoloji" . Encyclopedia Britannica . Erişim tarihi: 2018-10-29 .
  3. ^ "DefinedTerm: Histology" . Tanımlanmış Terim . Erişim tarihi: 2018-10-29 .
  4. ^ Maximow, Alexander A .; Bloom, William (1957). Histoloji ders kitabı (Yedinci baskı). Philadelphia: WB Saunders Şirketi.
  5. ^ a b c d e f g h Leeson, Thomas S .; Leeson, C. Roland (1981). Histoloji (Dördüncü baskı). WB Saunders Şirketi. s. 600. ISBN 978-0721657042.
  6. ^ a b c Stedman'ın tıbbi sözlüğü (27. baskı). Lippincott Williams ve Wilkins. 2006. ISBN 978-0683400076.
  7. ^ Padian, Kevin; Lamm, Ellen-Thérèse, editörler. (2013). Fosil tetrapodların kemik histolojisi: İlerleyen yöntemler, analizler ve yorumlama (1. baskı). California Üniversitesi Yayınları. s. 298. ISBN 978-0-520-27352-8.
  8. ^ Canoville A, Chinsamy A (2015). "Stereospondil Lydekkerina Huxleyi'nin Kemik Mikro Yapısı, Sert Permiyen Yok Olma Sonrası Ortama Uyum Sağlayan Stratejileri Gösteriyor". Anat Rec (Hoboken) . 298 (7): 1237–54. doi : 10.1002 / ar.23160 . PMID 25857487 . S2CID 43628074 .  
  9. ^ Bir b c d e f g h i j k l m n o P q r Ross, Michael H .; Pawlina, Wojciech (2016). Histoloji: bir metin ve atlas: ilişkili hücre ve moleküler biyoloji ile (7. baskı). Wolters Kluwer. s. 984p. ISBN 978-1451187427.
  10. ^ Rosai J (2007). "Neden mikroskopi cerrahi patolojinin temel taşı olarak kalacaktır" . Lab Invest . 87 (5): 403–8. doi : 10.1038 / labinvest.3700551 . PMID 17401434 . S2CID 27399409 .  
  11. ^ Titford, Michael; Bowman, Blythe (2012). "Histoteknologlar İçin Gelecekte Ne Bekleyebilir?" . Laboratuvar Tıbbı . 43 (ek 2): e5 – e10. doi : 10.1309 / LMXB668WDCBIAWJL . ISSN 0007-5027 . 
  12. ^ Bir b c d e f g h i j k l m n o P q r s t Bancroft John; Stevens, Alan, editörler. (1982). Histolojik Tekniklerin Teorisi ve Uygulaması (2. baskı). Longman Group Limited.
  13. ^ a b c d e f Wick, Mark R. (2019). "Anatomik patolojide hematoksilen ve eozin boyası - Laboratuvarda kalite güvencesi için sıklıkla ihmal edilen bir odak noktası". Tanısal Patoloji Seminerleri . 36 (5): 303–311. doi : 10.1053 / j.semdp.2019.06.003 . ISSN 0740-2570 . PMID 31230963 .  
  14. ^ Weiss AT, Delcour NM, Meyer A, Klopfleisch R (Temmuz 2011). "Formalinle fikse edilmiş ve parafine gömülü dokulardan genomik DNA'nın verimli ve uygun maliyetli ekstraksiyonu" . Veteriner Patolojisi . 48 (4): 834–8. doi : 10.1177 / 0300985810380399 . PMID 20817894 . S2CID 34974790 .  
  15. ^ Bennike TB, Kastaniegaard K, Padurariu S, Gaihede M, Birkelund S, Andersen V, Stensballe A (Mart 2016). "Ani dondurulmuş, RNAlater korunmuş ve formalinle sabitlenmiş parafine gömülü insan doku örneklerinin proteomunun karşılaştırılması" . EuPA Açık Proteomik . 10 : 9–18. doi : 10.1016 / j.euprot.2015.10.001 . PMC 5988570 . PMID 29900094 .  
  16. ^ Slaoui, Mohamed; Fiette Laurence (2011). "Histopatoloji Prosedürleri: Doku Örneklemesinden Histopatolojik Değerlendirmeye". İlaç Güvenliği Değerlendirmesi . Moleküler Biyolojide Yöntemler. 691 . s. 69–82. doi : 10.1007 / 978-1-60761-849-2_4 . ISBN 978-1-60327-186-8. ISSN  1064-3745 . PMID  20972747 .
  17. ^ a b Drury, RAB; Wallington, EA (1980). Carleton'un Histolojik Tekniği (5. baskı). Oxford University Press. s. 520. ISBN 0-19-261310-3.
  18. ^ Dapson RW, Horobin RW (2009). "Yirmi birinci yüzyıl perspektifinden boyalar". Biotech Histochem . 84 (4): 135–7. doi : 10.1080 / 10520290902908802 . PMID 19384743 . S2CID 28563610 .  
  19. ^ a b Bracegirdle B (1977). "Histolojinin Tarihi: Kaynakların Kısa Bir İncelemesi". Bilim Tarihi . 15 (2): 77–101. Bibcode : 1977HisSc..15 ... 77B . doi : 10.1177 / 007327537701500201 . S2CID 161338778 . 
  20. ^ Motta PM (1998). "Marcello Malpighi ve fonksiyonel mikroanatominin temelleri" . Anat Rec . 253 (1): 10–2. doi : 10.1002 / (SICI) 1097-0185 (199802) 253: 1 <10 :: AID-AR7> 3.0.CO; 2-I . PMID 9556019 . 
  21. ^ Adelmann HB, Malpighi M (1966). Marcello Malpighi ve Embriyolojinin Evrimi . 5 . Ithaca, NY: Cornell University Press. OCLC 306783 . 
  22. ^ Bichat X (1801). "Düşünceler générales" . Anatomie générale aplike à la physiologie et à la médecine (Fransızca). Paris: Chez Brosson, Gabon et Cie, Libraires, rue Pierre-Sarrazin, no. 7, et place de l'École de Médecine. s. cvj – cxj.
  23. ^ Mayer AF (1819). Ueber Histologie und eine neue Eintheilung der Gewebe des menschlichen Körpers (Almanca). Bonn: Adolph Marcus.
  24. ^ a b c Bock O (2015). "On dokuzuncu yüzyılın sonuna kadar histolojinin gelişiminin tarihi" . Araştırma . 2 : 1283. doi : 10.13070 / rs.en.2.1283 (etkin olmayan 2021-01-11).CS1 maint: DOI inactive as of January 2021 (link)
  25. ^ Aksine LJ (1978). The Genesis of Cancer: A Study in the History of Ideas . Baltimore: Johns Hopkins Üniversitesi Yayınları. ISBN 9780801821035. Bichat'ın yirmi bir dokusunun çoğu, çağdaş histologlar tarafından genel olarak kabul edilen dört kategori altında toplanabilir; epitel, bağ dokusu, kas ve sinir. Bichat dokularından dördü epitel (epidermoid, mukus, seröz ve sinovyal) başlığı altında yer alır; altı bağ dokusu (dermoid, lifli, fibrokartilajinöz, kıkırdaklı, kemikli ve hücresel); iki kas altı; ve iki sinir altındadır - sinirsel yöneten "hayvan" yaşamı ile sinirsel yöneten "organik" yaşam arasındaki ayrım, istemli ve istemsiz sinir sistemleri arasındaki farka karşılık gelir. Uzun çekişme kaynakları olan arterler ve damarlar, bugün bileşik dokular olarak sınıflandırılıyor. Absorbanlar ve ekshalanlar (Bichat'ın açık uçlu damarlar olduğunu düşündüğü) düştü veya lenfatiklerle değiştirildi.Medüller sisteminin günümüz dokularından bir karşılığı yoktur.
  26. ^ Meli DB (2017). Hastalığın görselleştirilmesi: patolojik örneklerin tarihi ve sanatı . Chicago: Chicago Press Üniversitesi.[ sayfa gerekli ]
  27. ^ Bock, Ortwin (2015/01/05). "On dokuzuncu yüzyılın sonuna kadar histolojinin gelişiminin tarihi" . Araştırma .
  28. ^ "Nobel Fizyoloji veya Tıp Ödülü 1906" . NobelPrize.org .
  29. ^ Dominietto, Marco; Rudin, Markus (2014). "Manyetik rezonans in vivo histoloji sağlayabilir mi?" . Genetikte Sınırlar . 4 : 298. doi : 10.3389 / fgene.2013.00298 . ISSN 1664-8021 . PMC 3888945 . PMID 24454320 .   
  30. ^ Delnoij, Thijs; van Suylen, Robert Jan; Cleutjens, Jack PM; Schalla, Simon; Bekkers, Sebastiaan CAM (Ekim 2009). "Kardiyovasküler manyetik rezonans görüntüleme ile in vivo histoloji" . Avrupa Kalp Dergisi . 30 (20): 2492. doi : 10.1093 / eurheartj / ehp319 . ISSN 1522-9645 . PMID 19696188 .  
  31. ^ Köprü, Holly; Clare, Stuart (2006-01-29). "Yüksek çözünürlüklü MRI: in vivo histoloji mi?" . Kraliyet Topluluğu'nun Felsefi İşlemleri B: Biyolojik Bilimler . 361 (1465): 137-146. doi : 10.1098 / rstb.2005.1777 . ISSN 0962-8436 . PMC 1626544 . PMID 16553313 .   
  32. ^ Deistung, Andreas; Schäfer, Andreas; Schweser, Ferdinand; Biedermann, Uta; Turner, Robert; Reichenbach, Jürgen R. (Ocak 2013). "İn vivo histolojiye doğru: Kantitatif duyarlılık haritalamasının (QSM) ultra yüksek manyetik alan gücünde büyüklük, faz ve R2⁎ görüntüleme ile karşılaştırılması". NeuroImage . 65 : 299–314. doi : 10.1016 / j.neuroimage.2012.09.055 . PMID 23036448 . S2CID 140122831 .